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Sommaire

  • 1Principe du clonage moléculaire
  • 2Construction d'un ADN recombinant
    • 2.1Obtention de l'insert
    • 2.2Ouverture du vecteur et préparation de l'insert
    • 2.3Orientation et cadre de lecture
  • 3Vecteurs de clonage et vecteurs d'expression
    • 3.1Propriétés d'un vecteur
    • 3.2Exprimer une séquence clonée
  • 4Introduction dans la cellule et sélection des clones lock — section verrouillée
  • 5Production de protéines recombinantes lock — section verrouillée
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B3 · Méthodes

Clonage, vecteurs et ADN recombinant

Décrire la construction d'un ADN recombinant, les vecteurs de clonage et d'expression et la sélection des clones. Présenter la production de protéines recombinantes et ses applications médicales.

Biologie moléculaire et génome·schedule7 min de lecture·quiz17 QCM corrigés

Principe du clonage moléculaire

Définition

ADN recombinant

Molécule d'ADN obtenue par l'association artificielle de fragments provenant de sources distinctes ou réorganisés selon une combinaison choisie.

Le clonage moléculaire consiste à introduire un fragment d'ADN déterminé dans une molécule capable de se maintenir dans une cellule hôte. Après multiplication de cette cellule, toutes ses descendantes portent en principe la même construction génétique.

Définition

Clone

Population de cellules issues d'une même cellule initiale et supposées génétiquement identiques pour la construction étudiée.

Le fragment que l'on souhaite cloner est appelé insert. La molécule d'ADN qui le reçoit est le vecteur. Leur association forme la construction recombinante. Le clonage permet soit de multiplier l'insert, soit de provoquer son expression afin de produire un ARN ou une protéine.

Attention

Clonage moléculaire et clonage d'un organisme

Le clonage moléculaire multiplie une séquence d'ADN dans des cellules hôtes. Il ne correspond pas à la production d'un organisme entier génétiquement identique.

Construction d'un ADN recombinant

Obtention de l'insert

L'insert peut être isolé à partir d'un ADN génomique, obtenu sous forme d'ADN complémentaire ou amplifié à partir d'un ADN matrice. Les principes de l'amplification par PCR relèvent de la fiche consacrée à cette méthode.

Définition

ADN complémentaire ou ADNc

ADN synthétisé à partir d'un ARN matrice par une transcriptase inverse. Lorsqu'il dérive d'un ARN messager mature, il ne contient pas les introns éliminés lors de l'épissage.

L'ADNc est particulièrement adapté à la production d'une protéine eucaryote dans une cellule procaryote, car celle-ci ne possède généralement pas la machinerie nécessaire pour retirer les introns d'un gène eucaryote.

Ouverture du vecteur et préparation de l'insert

Une endonucléase de restriction reconnaît une courte séquence particulière de l'ADN et coupe les liaisons phosphodiester des deux brins. La coupure peut former :

  • des extrémités franches, sans région simple brin saillante ;
  • des extrémités cohésives, portant de courtes séquences à simple brin complémentaires.

Les extrémités cohésives s'apparient spontanément lorsqu'elles sont complémentaires, ce qui facilite et rend plus spécifique l’assemblage. L'utilisation de deux enzymes différentes peut imposer l'orientation de l'insert : chaque extrémité ne devient compatible qu'avec une extrémité déterminée du vecteur.

Définition

ADN ligase

Enzyme qui rétablit une liaison phosphodiester entre une extrémité 3′3^\prime3′ hydroxyle et une extrémité 5′5^\prime5′ phosphate de deux fragments d'ADN adjacents.

L'appariement des bases maintient temporairement les fragments ensemble, mais seule la ligase rend leur union covalente et durable. D'autres stratégies d'assemblage utilisent des régions homologues entre fragments ; leur objectif reste identique : obtenir une molécule continue dans l'orientation et le cadre de lecture souhaités.

Orientation et cadre de lecture

Pour une simple multiplication de l'ADN, l'orientation de l'insert peut parfois être secondaire. Pour produire une protéine, elle est indispensable : la séquence codante doit être placée dans le sens de transcription imposé par le promoteur.

Le cadre de lecture correspond au découpage de la séquence codante en triplets successifs. Toute jonction incorrecte peut décaler ce cadre et modifier l'ensemble de la séquence protéique située en aval.

À retenir

Un ADN recombinant destiné à l'expression doit posséder un insert dans la bonne orientation, sans rupture du cadre de lecture et sous le contrôle de signaux d'expression reconnus par la cellule hôte.

Vecteurs de clonage et vecteurs d'expression

Propriétés d'un vecteur

Définition

Vecteur de clonage

Molécule d'ADN capable de recevoir un insert, d'entrer dans une cellule hôte et de s'y maintenir afin de permettre la multiplication de cet insert.

Un vecteur de clonage comporte au minimum :

  • une origine de réplication, séquence permettant sa duplication dans l'hôte ;
  • un marqueur de sélection, caractère génétique permettant d'identifier les cellules ayant acquis le vecteur ;
  • une région contenant des sites de restriction utilisables pour insérer l'ADN ;
  • une structure compatible avec la cellule hôte choisie.

Le plasmide est une molécule d'ADN généralement circulaire, distincte du chromosome cellulaire et capable de réplication autonome. Sa petite taille facilite sa purification et sa manipulation. Pour des inserts plus longs, des vecteurs dérivés de virus ou de chromosomes artificiels peuvent être employés.

Exprimer une séquence clonée

Définition

Vecteur d'expression

Vecteur contenant, en plus des éléments nécessaires à son maintien, les séquences régulatrices permettant la transcription et éventuellement la traduction de l'insert dans une cellule hôte.

Un vecteur d'expression comprend notamment :

  • un promoteur, sur lequel s'assemble la machinerie de transcription ;
  • une séquence permettant l'arrêt correct de la transcription ;
  • un signal d'initiation de la traduction reconnu par l'hôte ;
  • éventuellement un signal d'adressage ou de sécrétion ;
  • éventuellement une séquence codant une étiquette facilitant la purification ou la détection de la protéine.

Le promoteur peut être constitutif ou inductible. Un promoteur inductible permet de déclencher l'expression à un moment choisi, ce qui limite les effets toxiques d'une production permanente et sépare la phase de multiplication cellulaire de la phase de production.

Comparaison

Vecteur de clonage et vecteur d'expression

CritèreVecteur de clonageVecteur d'expression
Finalité principalemultiplication de l'insertproduction d'un ARN ou d'une protéine
Éléments indispensablesorigine de réplication et marqueur de sélectionéléments de clonage et séquences régulatrices
Orientation de l'insertparfois indifférenteimposée par le promoteur
Cadre de lecturesans importance si l'ADN seul est étudiéindispensable pour produire la protéine attendue

Introduction dans la cellule et sélection des clones

L'entrée d'un ADN exogène dans une cellule bactérienne est appelée transformation. Pour les cellules eucaryotes, le terme transfection est couramment utilisé lorsque l'ADN est introduit par une méthode non virale. Une cellule ayant reçu le vecteur est dite transformée ou transfectée selon le contexte.

Après cette étape, plusieurs populations peuvent coexister : cellules sans vecteur, cellules portant un vecteur refermé sans insert et cellules portant le recombinant attendu.

Définition

Sélection

Procédure qui permet uniquement aux cellules possédant un caractère déterminé, généralement apporté par le vecteur, de survivre ou de se multiplier.

Définition

Criblage

Recherche, parmi les cellules sélectionnées, de celles qui contiennent précisément la construction génétique attendue.

Le marqueur de sélection élimine les cellules dépourvues de vecteur, mais ne prouve pas que celui-ci contient le bon insert. Le criblage peut reposer sur un phénotype rapporteur, une amplification ciblée, une digestion de contrôle ou une hybridation avec une sonde. La confirmation définitive de la séquence et des jonctions repose sur le séquençage, présenté dans la fiche dédiée.

Exemple

Distinguer sélection et criblage sur des colonies bactériennes

Après transformation bactérienne, l'étalement sur un milieu contenant un antibiotique donne 20 colonies survivantes.

Le marqueur de résistance porté par le vecteur explique leur survie, mais le contrôle par amplification ciblée montre que :

  • 14 colonies possèdent un vecteur sans insert ;
  • 6 colonies possèdent le recombinant attendu.

Le criblage identifie donc 20−14=620 - 14 = 620−14=6 colonies portant l'insert attendu.

La sélection a permis de conserver 20 colonies porteuses d'un vecteur, tandis que le criblage a permis d'isoler les 6 colonies contenant la construction recherchée. Une colonie sélectionnée n'est donc pas nécessairement un clone recombinant correct.

Attention

Sélection ne signifie pas validation

Une cellule sélectionnée possède le marqueur recherché, mais son vecteur peut être vide, réarrangé ou contenir l'insert dans une mauvaise orientation. La construction doit donc être contrôlée avant son utilisation.

Méthode

Obtenir et valider un clone recombinant

  1. Définir l'insert, le vecteur et la cellule hôte adaptés à la finalité
  2. Préparer des extrémités compatibles sur l'insert et le vecteur
  3. Assembler les fragments pour former l'ADN recombinant
  4. Introduire la construction dans les cellules hôtes
  5. Sélectionner les cellules ayant acquis le vecteur
  6. Cribler les colonies afin d'identifier celles portant l'insert attendu
  7. Contrôler l'orientation, les jonctions et la séquence
  8. Amplifier séparément un clone validé

Production de protéines recombinantes

Définition

Protéine recombinante

Protéine produite par une cellule hôte à partir d'une séquence codante introduite artificiellement dans un vecteur d'expression.

La production commence par le choix de l'hôte. Les cellules procaryotes se multiplient rapidement et donnent des rendements élevés, mais réalisent difficilement certaines modifications post-traductionnelles. Les cellules eucaryotes permettent un repliement, une maturation et une glycosylation plus proches de ceux des protéines humaines, au prix d'une culture plus complexe.

La construction validée est introduite dans l'hôte, puis les cellules productrices sont cultivées. L'expression est déclenchée si le promoteur est inductible. La protéine est ensuite récupérée dans les cellules ou dans le milieu lorsqu'elle est sécrétée, puis purifiée. Son identité, sa pureté, sa structure et son activité biologique doivent être contrôlées.

Les protéines recombinantes ont des applications médicales majeures :

  • production de protéines thérapeutiques remplaçant ou modulant une fonction biologique ;
  • fabrication d'anticorps et d'autres molécules de ciblage ;
  • production d'antigènes destinés aux vaccins ;
  • préparation de réactifs enzymatiques ou antigéniques pour le diagnostic ;
  • étude de protéines impliquées dans les maladies et recherche de cibles thérapeutiques.

La qualité ne dépend donc pas seulement de la séquence d'ADN. Le système d'expression doit aussi assurer une maturation correcte, limiter les contaminants issus de l'hôte et permettre une production reproductible.

À retenir

La stratégie complète associe construction, sélection, criblage et validation. La production d'une protéine fonctionnelle exige en plus un vecteur d'expression et une cellule hôte compatibles avec sa maturation.

Points clés
  • Un ADN recombinant associe un insert à un vecteur capable de se maintenir dans une cellule hôte
  • Les enzymes de restriction préparent les fragments et l'ADN ligase établit leur union covalente
  • Un vecteur de clonage multiplie l'insert, tandis qu'un vecteur d'expression contient les signaux nécessaires à sa transcription et à sa traduction
  • La sélection identifie les cellules porteuses du vecteur, alors que le criblage recherche la construction correcte
  • Tout clone doit être contrôlé pour la présence, l'orientation et la séquence de l'insert
  • La production d'une protéine recombinante dépend du choix de l'hôte, de l'expression, de la maturation et de la purification

Fiches connexes

À réviser dans la foulée, sur Méthodes.

  • Fiche 01PCR, RT-PCR et PCR quantitativeMéthodes
  • Fiche 02Électrophorèse des acides nucléiques et techniques de transfertMéthodes
  • Fiche 03Séquençage : méthode de Sanger et séquençage haut débitMéthodes
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    • 2.3Orientation et cadre de lecture
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    • 3.1Propriétés d'un vecteur
    • 3.2Exprimer une séquence clonée
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